Showing papers by "Ellen Kandeler published in 1991"

Bestimmung der N-Mineralisation im anaeroben Brutversuch

Abstract: Wassergesattigte Boden werden unter aeroben Bedingungen bei 25°C inkubiert. Der aus organischen N-Verbindungen freigesetzte NH4+-N und NO3--N werden kolorimetrisch bestimmt.

Bestimmung der Chitinase-Aktivität

Abstract: Bodenproben werden nach Zugabe einer Chitinsuspension 16 Stunden bei 37°C inkubiert Das freigesetzte N-Acetylglucosamin wird mit Kaliumchlorid extrahiert und seine Konzentration nach Farbung mit 4-(Dimethylamino)benzaldehyd photometrisch bestimmt

Bestimmung der Dehydrogenase-Aktivität mit INT

Abstract: Bodenproben werden mit einer 2(p-iodophenyl)-3-(p-nitrophenyl)- 5-phenyltetrazoliumchlorid-Losung (INT) versetzt und 2 Stunden bei 40°C bebrutet. Das reduzierte INT-Formazan wird mit Dimethylformamid und Ethanol extrahiert und photometrisch bei 464 nm gemessen.

Bestimmung der aktuellen und potentiellen Nitrifikation

Abstract: Zur Bestimmung der potentiellen Nitrifikation (Ammoniumoxidation) werden Bodenproben 5 Stunden bei 25°C mit Ammoniumsulfat als Substrat inkubiert, die gebildete Menge an Nitrit wird gemessen. Die aktuelle Nitrifikation bestimmt man in analoger Weise, hier wird jedoch auf die Zugabe von Ammoniumsulfat verzichtet. Die Oxidation von Nitrit wahrend des Versuchszeitraumes wird durch Natriumchlorat gehemmt.

Bestimmung der Arylsulfatase-Aktivität

Abstract: Bodenproben werden nach Zusatz einer p-Nitrophenylsulfatlosung 1 Stunde bei 37°C inkubiert. Das enzymatisch abgespaltene Nitrophenol wird mit Natronlauge angefarbt und bei 420 nm photometrisch bestimmt.

Bestimmung der Xylanase-Aktivität

Abstract: Unter Verwendung von Xylan als Substrat werden Bodenproben 24 Stunden bei 50°C und pH 5,5 inkubiert. Die freigesetzten reduzierenden Zucker bewirken die Reduktion von K-Hexacyanoferrat-III in alkalischer Losung. Das reduzierte K-Hexacyanoferrat-II reagiert mit Fe-III-Ammo- niumsulfat in saurer Losung zu einem Fe-III-Hexacyanoferrat-II-Komplex (Berliner Blau), welcher kolorimetrisch erfast wird.

Bestimmung der Phosphomonoesterase- Aktivität (saure, neutrale und alkalische Phosphatase)

Abstract: Bodenproben werden mit einer Phenylphosphat-Dinatriumsalzlosung versetzt und 3 Stunden bei 37°C bebrutet. Das abgespaltene Phenol wird mit 2,6-Dibromchinon-Chlorimid angefarbt und photometrisch bei 614 nm gemessen.

Bodenprobenahme und Probenvorbereitung

Abstract: Jeder mechanische Eingriff im Boden verursacht Veranderungen des Bodenlebens und dessen biologischer Aktivitat. Durch die Probenahme wird ein Teil des Bodens aus seinem naturlichen Verband entnommen. Wichtige biologische und chemisch-physikalische Vorgange werden unterbrochen. Das Ausmas einer Aktivitatsanderung hangt von der Grose der Bodenprobe und der nachfolgenden Behandlung der Probe ab (Siebung, Trocknung oder Kuhlen im naturfeuchten Zustand). Eine luftgetrocknete und wieder befeuchtete Bodenprobe erreicht meist nicht mehr ihre ursprungliche Aktivitat. Aktivitatsbestimmungen werden folglich an naturfeuchtem Bodenmaterial vorgenommen. Die Bodenproben sind von der Probenahme bis zur Analyse vor Austrocknung zu schutzen.

Bestimmung der CM-Cellulase-Aktivität

Abstract: Unter Verwendung von CM-Cellulose als Substrat werden Bodenproben 24 Stunden bei 50°C und pH 5,5 inkubiert. Die freigesetzten reduzierenden Zucker bewirken die Reduktion von K-Hexacyanoferrat-III in alkalischer Losung. Das reduzierte K-Hexacyanoferrat-II reagiert mit Fe-III-Ammo- niumsulfat in saurer Losung zu einem Fe-III-Hexacyanoferrat-II-Komplex (Berliner Blau), welcher kolorimetrisch erfast wird.

Bestimmung der mikrobiellen Respiration im Laborversuch

Abstract: Der Boden wird bei 25°C bebrutet und das entweichende Kohlendioxid in Natronlauge absorbiert. Nach Rucktitration der unverbrauchten Lauge wird die Kohlendioxidfreisetzung errechnet.

Bestimmung der Phosphodiesterase- Aktivität

Abstract: Bodenproben werden nach Zugabe einer gepufferten bis(p-Nitrophenyl) phosphatlosung 1 Stunde bei 37°C inkubiert. Die enzymatisch freigesetzte Menge an p-Nitrophenol wird mit einer alkalischen Trislosung angefarbt und photometrisch bei 400 nm bestimmt.

Bestimmung der Phosphotriesterase- Aktivität

Abstract: Bodenproben werden mit tris(p-Nitrophenyl)phosphat als Substrat versetzt und 1 Stunde bei 37°C inkubiert. Die enzymatisch freigesetzte Menge an p-Nitrophenol wird mit Natronlauge angefarbt und photometrisch bei 400 nm bestimmt.

Bestimmung der Phospholipase C-Aktivität

Abstract: Bodenproben werden mit p-Nitrophenylphosphorylcholin (NPPC) als Substrat 2 Stunden bei 30°C inkubiert. Die gebildete Menge an p-Nitrophenol (PNP) wird photometrisch bestimmt.

Bestimmung der Arginin-Desaminierung

Abstract: Nach einer zweistundigen Inkubation der Bodenproben mit einer wasrigen Argininlosung wird das gebildete Ammonium mit einer 2 M Kaliumchloridlosung extrahiert und kolorimetrisch bestimmt. Die Bildung des blau gefarbten Indophenols beruht auf der Phenolat-Hypochlorit-Reaktion (Berthelotsche Reaktion).

Bestimmung der Protease-Aktivität

Abstract: Nach Zugabe von Na-Caseinat als Substrat werden Bodenproben 2 Stunden bei 50°C inkubiert. Die gebildeten Aminosauren werden mit Trichloressigsaure extrahiert. Die freigesetzten aromatischen Aminosauren werden nach Farbung mit Folin-Ciocalteu’schem Reagenz kolorimetrisch bestimmt.

Bestimmung der Nitrifikation im Brutversuch

Abstract: Bodenproben werden mit Ammoniumsulfatlosung versetzt und bis zu 3 Wochen bei 25°C bebrutet. Nach Extraktion mit 2 M Kaliumchloridlosung werden Ammonium und Nitrat kolorimetrisch bestimmt. Die Oxidation der Substratvorlage wird als Nitrifikationsumsatz gewertet und in Prozent der zugesetzten Stickstoffkonzentration angegeben.

Bestimmung der Biomasse mit der substratinduzierten Respirationsmethode

Abstract: Bodenproben werden mit Glucose versetzt und die unmittelbar folgende Atmungsreaktion wird gemessen. Durch Kalibrierung dieser Methode mit der Fumigations-Inkubations-Methode kann auf mg Biomasse-C umgerechnet werden.

Bestimmung der Katalase-Aktivität

Abstract: Aus einer gepufferten Bodensuspension wird nach Zugabe von Wasserstoffperoxid die innerhalb von 3 Minuten enzymatisch abgespaltene O2-Menge gasvolumetrisch gemessen und in Prozent angegeben.

Bestimmung der biologischen Stickstoffixierung mit der 15 N 2 -Methode

Abstract: Naturfeuchter Boden wird in einem gasdichten Gefas mit einem Gasgemisch aus 15N2, O2 und einem inerten Gas (Argon oder Helium) versetzt. Nach einer Inkubation von mehreren Tagen wird der Gesamtstickstoff der Bodenprobe bestimmt. Der Anteil an fixiertem 15N2 wird massenspektrometrisch erfast.

Bestimmung der Nitratreduktase-Aktivität

Abstract: Zur Bestimmung der dissimilatorischen Nitratreduktase-Aktivitat werden Boden mit Wasser uberstaut, mit KNO3 versetzt und unter anaeroben Bedingungen 24 Stunden bei 25°C inkubiert. Die Nitritreduktase wird durch Zugabe von 2,4-Dinitrophenol gehemmt. Nach der Bebrutung wird das gebildete Nitrit mit Kaliumchlorid extrahiert und anschliesend kolori- metrisch bestimmt.

Bestimmung der Biomasse mit der Fumigation-Inkubations-Methode

Abstract: Der Boden wird zur Abtotung der Mikroorganismen mit Chloroform begast (fumigiert). Organismen eines zugesetzten Inokulums bauen wahrend einer zehntagigen Inkubation (ohne Chloroform) die abgetoteten Organismen ab. Dies fuhrt zu einem Anstieg der CO2-Freisetzung (“flush of decomposition”), welche zur Quantifizierung des Biomasse-C herangezogen wird.

Bestimmung der Urease-Aktivität mit der Destillationsmethode

Abstract: Der nach Harnstoffhydrolyse freigesetzte Ammoniak wird mittels Wasserdampfdestillation in ein Borsaure-Indikatorgemisch destilliert und mit 2,5 mM Schwefelsaure titrimetrisch bestimmt.

Bestimmung der aktuellen und potentiellen Denitrifikation mit der Acetyleninhibierungsmethode

Abstract: Naturfeuchte Bodenproben werden unter aeroben oder anaeroben Bedingungen nach Zusatz von Acetylen bis zu 48 Stunden bei 25°C inkubiert. Das gebildete N2O wird nach der Bebrutung gaschromatographisch bestimmt.

Bestimmung von ATP

Abstract: Gesiebtes Bodenmaterial wird mit Trichloressigsaure, Phosphat und Paraquat extrahiert. ATP wird im Filtrat mittels der Luziferin-Luziferase- Reaktion luminometrisch nachgewiesen.

Bestimmung der anorganischen Pyrophosphatase-Aktivität

Abstract: Bodenproben werden nach Zugabe einer gepufferten Pyrophosphatlosung 1 Stunde bei 37°C inkubiert. Enzymatisch freigesetztes Orthophosphat wird mit Schwefelsaure extrahiert und nach Anfarbung mit Ammoniummolybdat photometrisch bei 700 nm gemessen.

Bestimmung der Lipase-Aktivität mit der fluorimetrischen Methode

Abstract: Bodenproben werden mit dem fluorogenen Substrat 4-Methylumbelli- ferylheptanoat versetzt und 10 Minuten bei 30°C inkubiert. Nach Zentrifugation wird das abgespaltene 4-Methylumbelliferon im Uberstand fluori- metrisch bestimmt.

Bestimmung der Biomasse durch mathematische Analyse von Respirationskurven

Abstract: Aus den Atmungskurven eines nicht fumigierten und eines fumigierten Bodens, die mit einem Glucosemedium versetzt wurden, kann durch stoichiometrische und biokinetische Beziehungen auf die aktive und totale Biomasse geschlossen werden.

Bestimmung des Biomasse-Stickstoffs mit der Fumigation-Extraktions-Methode

Abstract: Fumigierter Boden wird mit einer Kaliumchloridlosung extrahiert und filtriert. Der Aminosaure-N der Filtrate wird mit Hilfe der Ninhydrin- Reaktion bestimmt und zur Berechnung des Biomasse-N herangezogen.

Bestimmung der ß-Glucosidase-Aktivität

Abstract: Bodenproben werden mit dem Substrat s-Glucosido-Saligenin (Salicin) 3 Stunden bei 37°C inkubiert. Das aus dem Substrat freigesetzte Saligenin wird nach Farbung mit 2,6-Dibromchinon-4-Chlorimid kolorimetrisch bestimmt. Saligenin bildet bei pH-Werten I 9 mit 2,6-Dibromchinon- 4-Chlorimid einen blauen Indophenolfarbstoff mit derselben Extinktion bei 578 nm wie aquimolare Mengen von Phenol.

Bestimmung der Dimethylsulfoxid- Reduktion

Abstract: Naturfeuchtes Bodenmaterial wird nach Zusatz von Dimethylsulfoxid 3 Stunden bei 30°C in einem gasdichten Gefas inkubiert. Nach der Inkubation wird die gebildete Menge an Dimethylsufid gaschromatographisch erfast.